Redan innan födseln fastställs kvinnors fertilitet, som karakteriseras av ett begränsat antal äggblåsor, så kallade folliklar. Beståndet av folliklar minskar naturligt med åldern, samtidigt som kvinnors fertilitet beror på deras steroid- och äggproduktion. Patologiska tillstånd som polycystiskt ovarialsyndrom (PCOS), prematur ovariell insufficiens (POI) och cancer, samt ett flertal livsstils- och miljöfaktorer, kan ha en negativ inverkan på kvinnors fertilitet. Eftersom alla dessa faktorer kan leda till minskad fertilitet, har fertilitetsbevarande tekniker samt assisterade fortplantningstekniker blivit allt mer viktiga. Aktuell forskning gällande regeneration av äggstockar innefattar bildandet av sfäroider och organoider, en ny typ av in vitro 3D-odling, som kan användas för att etablera modell system av olika organ. I denna masteruppsats jämfördes två olika system för 3D-odling, three-layer gradient system (3-LGS) samt Biosilk™, för att bilda äggstockssfäroider baserade på celler från cortex och medulla. I 3-LGS påträffades icke-organiserade cellaggregat, endast från medulla, fram till 25 dagar av odling. Dock resulterade 3-LGS inte i några sfäroider, för varken cortex eller medulla, efter 6 veckor av odling. Därför krävs det fortsatta försök för att kunna dra slutsatser om 3-LGS kan användas för att bilda 3D-kulturer från vuxna äggstocksceller. Däremot lyckades äggstockssfäroider framställas, från både cortex och medulla, med hjälp av Biosilk™ efter sammanlagt 6 veckor av odling. Dessa sfäroider antingen fixerades eller förvarades i -80°C för framtida bulk RNA-sekvensiering eller RNA fluorescerande in situ-hybridiserings (RNA-FISH). Ett RNA-FISH protokoll (RNAscope®) förfinades, för att bättre kunna visualisera äggstocksvävnad samt äggstockssfäroider. Vävnaden snittades antingen på behandlat täckglas eller på mikroskopglas. Då både äggstocksvävnad och Biosilk™ är autofluorescerande, blektes vävnadssnitten olika länge. Dessutom testades olika fluoroforer för att få en så bra signal som möjligt. Slutsatsen var att, vävnad snittad på behandlat täckglas inte genererade i en klarare signal från fluoroforerna som först förväntat. Istället hade vävnaden hög autofluorescens samt antingen vek sig eller föll av de behandlade täckglasen. Möjligtvis skulle RNAscope® protokollet kunna förfinas ytterligare, för att vidare undersöka om användandet av vävnad snittad på behandlade täckglas skulle vara fördelaktigt. Vävnad som blektes längre än vad det ursprungliga RNAscope® protokollet angav hade en lägre autofluorescens. Därav ledde förfiningen av protokollet till att det blev mer anpassat för äggstockssfäroider framställda med Biosilk™. Slutligen, uppvisade fluoroforerna TSA 520, TSA 570 och TSA 650 en skarpare signal än fluoroforerna Fluorescein Tyramide, Cy 3 och Cy 5. In humans, female fertility is established before birth and is characterized by a limited follicular reserve, which decreases naturally with age. Women’s fertility depends on the steroid and oocyte production, which can be negatively influenced by pathological conditions, such as polycystic ovary syndrome (PCOS), premature ovarian insufficiency (POI) and cancer, as well as several lifestyle and environmental factors. Since all of these factors could lead to a decrease in fertility, fertility preservation techniques and assisted reproductive technologies (ARTs) have become increasingly important. Current research for gonad regeneration include organoid and spheroid formation, as a novel type of in vitro 3D culturing, which enables the establishment of an organ model systems. During this thesis, two different 3D-culture systems: three-layer gradient system (3-LGS) and Biosilk™, were compared for spheroid formation from adult human ovarian cells, stemming from both cortex and medulla. In the 3-LGS, some unorganized aggregates, based on medulla, could be found up to 25 days of culture, but did not yield in any final 3D-cultures after 6 weeks of culture. Consequently, further investigations are needed to conclude whether 3-LGS can be used for human adult ovarian cells. In contrast to this, ovarian 3D-cultures could be achieved with Biosilk™, using cells from both cortex and medulla. These were either fixed or stored in -80°C for later bulk RNA-sequencing and RNA fluorescence in situ hybridization (RNA-FISH). An RNA-FISH protocol (RNAscope®) was refined for this purpose. Tested adjustments included varying glass-type for sectioning, and tissue bleaching time. Moreover, different fluorophores were tested for clearer visualization of ovarian tissue material. Tissue sectioned on coated coverslips did not result in a sharper signal as first anticipated. Instead, the tissue was both autofluorescent, and folding or falling off of the coated coverslips. Therefore, sectioning on coverslips was not continued. There is, however, a possibility that it could be used, if the RNAscope® protocol was adjusted accordingly. Since both ovarian tissue and Biosilk™ are autofluorescent, it was concluded that a longer bleaching time than in the original RNAscope® protocol, resulted in less autofluorescense and a more clear signal. Thereby, making the protocol more suitable for application on ovary 3D-cultures based on Biosilk™, than it was before. Lastly, the tested fluorophores TSA 520, TSA 570 and TSA 650 resulted in a sharper signal than Fluorescein Tyramide, Cy 3 and Cy 5.