Особенности миграции меченых мезенхимальных стволовых клеток костного мозга в организме крыс, у которых моделировали паркинсоноподобный синдром

Цель. Изучение локализации мезенхимальных стволовых клеток костного мозга (МСК КМ), меченных зеленым (DiO C18) и красным (Rhod Chol) витальными флуорохромами, после их внутривенного (ВВ) и интрацеребрального (ИЦ) введения в организм крыс, у которых моделировали паркинсоноподобный синдром (ПС).Материалы и методы. Животные распределены на 3 группы по 6 особей в каждой: I — контрольная, ВВ и ИЦ введение меченых МСК КМ; II — модель ПС и ВВ введение зеленых МСК КМ; III — модель ПС и ИЦ введение красных МСК КМ. Трансплантацию клеток проводили на 7-е сутки моделирования ПС. Эффективность трансплантации МСК оценивали по степени уменьшения выраженности двигательных расстройств, локализацию меченных флуорохромами клеток в органах крыс выявляли на криосрезах головного мозга, легких, селезенки, сердца, почек и печени с помощью люминесцентного микроскопа через 4 и 9 сут после введения МСК.Результаты. Флуоресцентные прижизненные красители DiO C18 (зеленый) и Rhod Chol (красный) могут быть эффективно использованы для изучения свойств МСК в культуре и их миграции в организме подопытных животных. Установлена избирательная миграция трансплантированных меченых МСК КМ к зонам повреждения головного мозга при моделировании ПС у крыс.Выводы. Для доставки МСК в поврежденную зону головного мозга могут быть использованы их как ИЦ, так и менее инвазивное ВВ введение.
Мета. Вивчення локалізації мезенхімальних стовбурових клітин кісткового мозку (МСК КМ), мічених зеленим (DiO C18) і червоним (Rhod Chol) вітальними флуорохромами, після їх внутрішньовенного (ВВ) і інтрацеребрального (ІЦ) введення в організм щурів, у яких моделювали паркінсоноподібний синдром (ПС).Матеріали і методи. Тварини розподілені на 3 групи по 6 особин у кожній: I — контрольна, ВВ і ІЦ введення мічених МСК КМ; II — модель ПС і ВВ введення зелених МСК КМ; III — модель ПС і ІЦ введення червоних МСК КМ. Клітини трансплантували на 7-му добу моделювання ПС. Ефективність трансплантації МСК оцінювали за ступенем зменшення вираженості рухових розладів, локалізацію мічених флуорохромами клітин в органах щурів виявляли на кріосрезах головного мозку, легенів, селезінки, серця, нирок і печінки за допомогою люмінесцентного мікроскопа через 4 і 9 діб після введення МСК.Результати. Флуоресцентні прижиттєві барвники DiO C18 (зелений) і Rhod Chol (червоний) можна ефективно використовувати для вивчення властивостей МСК в культурі та їх міграції в організмі дослідних тварин. Встановлено селективну міграцію трансплантованих мічених МСК КМ до зон пошкодження головного мозку при моделюванні ПС у щурів.Висновки. Для доставки МСК у пошкоджену зону головного мозку можуть бути використані їх як ІЦ, так і менш інвазивне ВВ введення.
The purpose. To study localization of bone marrow mesenchymal stem cells (BM MSC), labeled by green (DiO C18) and red (Rhod Chol) vital fluorochromes, after intravenous (IV) and intracerebral (IC) transplantation into rats with modeled Parkinson-like syndrome (PS).Materials and methods. The animals were divided into 3 groups, each of 6: I — control, IV and IC administration of labeled BM MSC; II — PS model and IV administration of green BM MSC; III — PS and IC transplantation of red BM MSC. Cell transplantation was performed on the 7th day after PS modeling. MSCs transplantation effectiveness was assessed by decrease of motor disorders degree, localization of fluorochrome labeled cells in the organs of rats was detected on cryosections of brain, lung, spleen, heart, kidneys and liver on the 4th and 9th day after MSC injection using fluorescence microscope.Results. Fluorescent vital dyes DiO C18 (green) and Rhod Chol (red) can be effectively used to study MSCs properties in culture and their migration in the body of experimental animals. Selective migration of transplanted labeled BM MSCs to damaged areas of the brain damage at PS modeling in rats was shown.Conclusions. For MSCs delivery in the brain damaged area their IC and less invasive IV transplantation can be used.