Pascale Jeannin, Pascale Pignon, Jean François Subra, Ariel Savina, Jean-François Augusto, Alain Morel, Alain Chevailler, Simon Blanchard, Christophe Créminon, Yves Delneste, Helmut Fickenscher, Jonathan Dauvé, Clement Adam, Vincent Larochette, Vincent Procaccio, Laurence Preisser, Anne Croue, Caroline Poli, Centre de Recherche en Cancérologie et Immunologie Nantes-Angers (CRCINA), Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Nantes - UFR de Médecine et des Techniques Médicales (UFR MEDECINE), Université de Nantes (UN)-Université de Nantes (UN)-Centre hospitalier universitaire de Nantes (CHU Nantes)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université d'Angers (UA), Laboratoire d'Immunologie et d'Allergologie, Centre Hospitalier Universitaire d'Angers (CHU Angers), PRES Université Nantes Angers Le Mans (UNAM)-PRES Université Nantes Angers Le Mans (UNAM), Service de Néphrologie-Dialyse-Transplantation [Angers], Université d'Angers (UA)-Centre Hospitalier Universitaire d'Angers (CHU Angers), Institut de Cancérologie de l'Ouest [Angers/Nantes] (UNICANCER/ICO), UNICANCER, Laboratoire Roche SAS [Boulogne Billancourt], Laboratoire d'Immunologie et d'Allergologie, CHU d'Angers, PRES Université Nantes Angers Le Mans (UNAM), Physiopathologie Cardiovasculaire et Mitochondriale (MITOVASC), Université d'Angers (UA)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Département de Biochimie et Génétique [Angers], Département de Pathologie Cellulaire et Tissulaire [Angers], Laboratoire d'Etudes et de Recherches en Immunoanalyses (LERI), Service de Pharmacologie et Immunoanalyse (SPI), Médicaments et Technologies pour la Santé (MTS), Université Paris-Saclay-Direction de Recherche Fondamentale (CEA) (DRF (CEA)), Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Université Paris-Saclay-Direction de Recherche Fondamentale (CEA) (DRF (CEA)), Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Médicaments et Technologies pour la Santé (MTS), Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE), Institute for Infection Medicine [Kiel, Germany], Christian-Albrechts-Universität zu Kiel (CAU)- University Medical Center Schleswig-Holstein, none, Université d'Angers (UA)-Université de Nantes (UN)-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Centre hospitalier universitaire de Nantes (CHU Nantes), MitoVasc - Physiopathologie Cardiovasculaire et Mitochondriale (MITOVASC), and Bernardo, Elizabeth
In physiological conditions, self-DNA released by dying cells is not detected by intracellular DNA sensors. In chronic inflammatory disorders, unabated inflammation has been associated with a break in innate immune tolerance to self-DNA. However, extracellular DNA has to complex with DNA-binding molecules to gain access to intracellular DNA sensors. IL-26 is a member of the IL-10 cytokine family, overexpressed in numerous chronic inflammatory diseases, in which biological activity remains unclear. We demonstrate in this study that IL-26 binds to genomic DNA, mitochondrial DNA, and neutrophil extracellular traps, and shuttles them in the cytosol of human myeloid cells. As a consequence, IL-26 allows extracellular DNA to trigger proinflammatory cytokine secretion by monocytes, in a STING- and inflammasome-dependent manner. Supporting these biological properties, IL-10–based modeling predicts two DNA-binding domains, two amphipathic helices, and an in-plane membrane anchor in IL-26, which are structural features of cationic amphipathic cell-penetrating peptides. In line with these properties, patients with active autoantibody-associated vasculitis, a chronic relapsing autoimmune inflammatory disease associated with extensive cell death, exhibit high levels of both circulating IL-26 and IL-26–DNA complexes. Moreover, in patients with crescentic glomerulonephritis, IL-26 is expressed by renal arterial smooth muscle cells and deposits in necrotizing lesions. Accordingly, human primary smooth cells secrete IL-26 in response to proinflammatory cytokines. In conclusion, IL-26 is a unique cationic protein more similar to a soluble pattern recognition receptor than to conventional cytokines. IL-26 expressed in inflammatory lesions confers proinflammatory properties to DNA released by dying cells, setting up a positive amplification loop between extensive cell death and unabated inflammation.