Frédéric Godde, Jean-Marie Schmitter, Vincent Parissi, Valentina Corvaglia, Philippe Pourquier, Stéphane Chaignepain, Mathieu Marchivie, Céline Chollet, Ivan Huc, Panchami Prabhakaran, Krzysztof Ziach, Partha Pratim Bose, Katta Laxmi-Reddy, Toulin, Stéphane, BLANC - Mimes oligoamides aromatiques de l'ADN double brin - - ARYNAMICS2011 - ANR-11-BS07-0013 - BLANC - VALID, Chimie et Biologie des Membranes et des Nanoobjets (CBMN), Université de Bordeaux (UB)-École Nationale d'Ingénieurs des Travaux Agricoles - Bordeaux (ENITAB)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Microbiologie Fondamentale et Pathogénicité (MFP), Université Bordeaux Segalen - Bordeaux 2-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut de Chimie de la Matière Condensée de Bordeaux (ICMCB), Université de Bordeaux (UB)-Institut Polytechnique de Bordeaux-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Institut de Recherche en Cancérologie de Montpellier (IRCM - U1194 Inserm - UM), CRLCC Val d'Aurelle - Paul Lamarque-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM)-Université de Montpellier (UM), ANR-11-BS07-0013,ARYNAMICS,Mimes oligoamides aromatiques de l'ADN double brin(2011), Université Sciences et Technologies - Bordeaux 1-École Nationale d'Ingénieurs des Travaux Agricoles - Bordeaux (ENITAB)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), Service de Chimie Bio-Organique et de Marquage (SCBM), Médicaments et Technologies pour la Santé (MTS), Direction de Recherche Fondamentale (CEA) (DRF (CEA)), Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Université Paris-Saclay-Direction de Recherche Fondamentale (CEA) (DRF (CEA)), Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Commissariat à l'énergie atomique et aux énergies alternatives (CEA)-Institut National de Recherche pour l’Agriculture, l’Alimentation et l’Environnement (INRAE)-Université Paris-Saclay, CNRS UMR 5097, Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS)-Université de Bordeaux (UB), Institut Européen de Chimie et Biologie, Signalisation et Mecanismes Moleculaires de l'Apoptose, Université Bordeaux Segalen - Bordeaux 2-Institut National de la Santé et de la Recherche Médicale (INSERM), Chimie supramoléculaire biomimétique et bio-organique - Institut Européen de Chimie et Biologie, Université Bordeaux Segalen - Bordeaux 2-Université Sciences et Technologies - Bordeaux 1, École Nationale d'Ingénieurs des Travaux Agricoles - Bordeaux (ENITAB)-Institut de Chimie du CNRS (INC)-Université de Bordeaux (UB)-Centre National de la Recherche Scientifique (CNRS), and Microbiologie cellulaire et moléculaire et pathogénicité (MCMP)
This work was supported by the Agence Nationale de la Recherche (project no. ANR-11-BS07-013-01 and project RETROSelect, jcjc2011 program), by the French National Research Agency against AIDS (ANRS, AO2016), by SIDACTION (AO2016, VIH20160721002), by the European Union under the Seventh Framework Programme (grant agreements nos. ERC-2012-AdG-320892 and PEOPLE-2011-IEF-300948) and by the Ligue contre le Cancer (Comité Languedoc Roussillon).; International audience; Numerous essential biomolecular processes require the recognition of DNA surface features by proteins. Molecules mimicking these features could potentially act as decoys and interfere with pharmacologically or therapeutically relevant protein–DNA interactions. Although naturally occurring DNA-mimicking proteins have been described, synthetic tunable molecules that mimic the charge surface of double-stranded DNA are not known. Here, we report the design, synthesis and structural characterization of aromatic oligoamides that fold into single helical conformations and display a double helical array of negatively charged residues in positions that match the phosphate moieties in B-DNA. These molecules were able to inhibit several enzymes possessing non-sequence-selective DNA-binding properties, including topoisomerase 1 and HIV-1 integrase, presumably through specific foldamer–protein interactions, whereas sequence-selective enzymes were not inhibited. Such modular and synthetically accessible DNA mimics provide a versatile platform to design novel inhibitors of protein–DNA interactions.