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Die Sequenzierung von DNA wurde zur Jahrtausendwende durch die Entwicklung der Sequenzierverfahren zweiter Generation revolutioniert. Die massive Parallelisierung als Kernkonzept erm��glicht seither eine stetig steigende Effizienz und damit sinkende Kosten f��r die Analyse von DNA und RNA. Grundlegend f��r die Parallelisierung ist auch der Einsatz von synthetisch erzeugten DNA-Sequenzen, Oligonukleotide genannt, die im Verbund mit nativen Molek��l- Fragmenten eigenst��ndige Einheiten, sogenannte Templates, bilden. Die Einbettung von zus��tzlichen Sequenzen zur Markierung der Templates vor der Verarbeitung begr��ndet das Feld der Barcodes. Das Auftreten von Sequenzfehlern und quantitativen Effekten im experimentellen Protokoll der Sequenzierung, wie in der PCR, motivieren die Anwendung von Fehlerkorrekturmechanismen und die Normalisierung von Z��hlgr����en durch den Einsatz von Barcodes. Die dargelegte Arbeit umfasst zwei unterschiedliche Konzepte zum Einsatz von Barcodes, wobei zwei g��nzlich verschiedene Anwendungsgebiete betrachtet werden: Zur gemeinsamen Sequenzierung von unterschiedlichen Proben, Multiplexing genannt, wird das Konzept der Watermark Codes f��r die Verwendung als Barcodes vorgeschlagen. Basierend auf dem urspr��nglichen Prinzip von Davey und MacKay aus dem Jahre 2000 wird das Konzept f��r die DNA-Sequenzierung angepasst und die Eignung des Verfahrens anhand praxistauglicher Codes gezeigt. Den zweiten Themenkomplex bildet der Einsatz von Zufallsbarcodes. Auf Basis der zuf��lligen Kombination von speziellen Oligonukleotiden k��nnen mit moderatem Aufwand sehr viele unterschiedliche Zufallsbarcodes erzeugt werden, die zur Z��hlung von Molek��len verwendet werden. Als Erweiterung von zwei bereits bekannten Konzepten wird ein verallgemeinertes Verfahren zur Implementierung von Zufallsbarcodes vorgestellt und experimentell anhand der Illumina Technologie evaluiert., Since the turn of the millennium, DNA-Sequencing has been revolutionised by the upcoming next-generation sequencing methods. The massive parallelisation, as a central concept, provides a steadily increasing efficiency and dropping costs on the analysis of DNA and RNA. For this parallel strategy an integration of synthetic DNA sequences, the oligonucleotides, is essential, which are used to build short separable compounds with native DNA fragments, the so called templates. The concept of barcodes is involved in the embedding of additional sequences into the oligonucleotides to label the compound-molecules prior to experimental processing. The existence of sequence errors and quantitative effects during the sequencing protocol, e.g. the PCR, gives the motivation for the application of error correction and the normalization of molecule-counts via labelling. The presented work includes two diverse concepts for barcoding, within two entirely different tasks: For the joint sequencing of several probes, known as multiplexing, the concept of Watermark Codes is proposed: Based on the original principle given by Davey and MacKay in the year 2000, an adaptation for DNA sequencing is given as a proof of principle study. The second topic is the application of random barcodes. Based on the stochastic combination of welldefined oligonucleotides, random barcodes can give a cost-efficient generation of diverse sequences to be used for counting molecules. As the generalisation of two known concepts, a novel method is proposed to produce random codes, which are evaluated via the Illumina sequencing technology.

Pregnant women are a high-risk population for severe/critical COVID-19 and mortality. However, the maternal-fetal immune responses initiated by SARS-CoV-2 infection, and whether this virus is detectable in the placenta, are still under investigation. Herein, we report that SARS-CoV-2 infection during pregnancy primarily induced specific maternal inflammatory responses in the circulation and at the maternal-fetal interface, the latter being governed by T cells and macrophages. SARS-CoV-2 infection during pregnancy was also associated with a cytokine response in the fetal circulation (i.e. umbilical cord blood) without compromising the cellular immune repertoire. Moreover, SARS-CoV-2 infection neither altered fetal cellular immune responses in the placenta nor induced elevated cord blood levels of IgM. Importantly, SARS-CoV-2 was not detected in the placental tissues, nor was the sterility of the placenta compromised by maternal viral infection. This study provides insight into the maternal-fetal immune responses triggered by SARS-CoV-2 and further emphasizes the rarity of placental infection.