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The production of the compound 2-hexyl-5-propyl resorcinol (HPR) by the rhizobacterium Pseudomonas chlororaphis PCL1606 (PcPCL1606) is crucial for fungal antagonism and biocontrol activity against the phytopathogenic fungis. The production of HPR is also involved in plant root colonization. This pleiotrophic response prompted us to study the potential role of HPR production in biofilm formation. The swimming motility of PcPCL1606 is enhanced by the disruption of HPR production. Mutants deficient in HPR production, revealed that colony morphology, adhesion and typical air–liquid interphase pellicles were all dependent on HPR production. The role of HPR production in biofilm architecture was analyzed at the initial stage of biofilm maturation using flow-through flow cells chambers . These experiments revealed that the HPR mutant cells had less tight unions than those producing HPR, suggesting an involvement of HPR in the production of the biofilm matrix by PcPCL1606. Universidad de Málaga. Campus de Excelencia Internacional Andalucía Tech. AGL2017-83368-C2-1-R

Comunicación a congreso internacional The use of organic soil amendments to enhance the suppressiveness of natural soils has been proposed as an additional strategy to control plant diseases. Avocado is one of the main subtropical crops in southern Spain and white root rot, caused by the fungus Rosellinia necatrix, one of the most serious problems. Previous studies on this pathosystem have shown that application of composted almond shells caused a change in soil microbial communities of both population and functional level. In this work, evaluation of the suppressive capacity of almond shells amended soils have performed. “In vitro” assays using two different susceptible plants, Persea americana (avocado) and Triticum aestivum (wheat), indicate a clear relationship between soil microbial communities and suppressiveness. Addition of composted almond shells to the agricultural soil resulted in increased suppressiveness against R. necatrix, directly associated to microbial components, since suppressiveness was reduced when the soil was pasteurized, and partially recovered when the pasteurized soil was complemented with field soil. Different strains producing antifungal compounds were correlated with suppressiveness by molecular approaches. Universidad de Málaga, Campus de Excelencia Internacional Andalucía Tech. Plan Nacional I+D+I from Ministerio de Economía (MINECO,Spain) (AGL2011-30354-C02-01) and co-financed by FEDER funds (EU). C. Vida was supported by a PhD fellowship from the FPI program of MINECO.

XXIV Congreso de Microbiología SEM Pseudomonas chlororaphis PCL1606 es una rizobacteria con capacidad de biocontrol frente a Rosellinia necatrix, agente causal de la podredumbre radicular blanca y Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycorpersici, que causa la podredumbre de cuello y raices de las plantas de tomate. Esta bacteria se caracteriza por la producción del antibiótico antifúngico 2-hexil, 5-propil resorcinol (HPR). Para determinar las bases genéticas de la producción de HPR en P. chlororaphis PCL1606, se rastreó una genoteca genómica de PCL1606 empleando como sonda los genes dar decritos previamente como responsables de la producción de HPR en P. aurantica BL915. Tras el análisis, se aisló el plásmido pCGNOV-1, que contenía un clon genómico con la presencia de cinco genes homólogos a los genes dar. Para determinar el papel de cada uno de los genes homólogos a los genes dar en la producción de HPR y su capacidad de biocontrol, se llevó a cabo la construcción de una colección de mutantes dirigidos en la producción de HPR por inserción. Además se obtuvieron los correspondientes complementantes de los mutantes defectivos. Sobre estos mutantes y sus respectivos complementates, se realizó una caracterización fenótipica de las propiedades relacionadas con el biocontrol, entre ellas la capacidad de antagonismo frente a Rosellina necatrix y Fusarium oxysporum, la producción de antibióticos y ensayos de control biológico en los sistemas experimentales aguacate-Rosellinia y tomate-Fusarium. Los resultados obtenidos muestran que los genes darA, darB pierden la capacidad de producir HPR. Esta propiedad queda restaurada al complementar cada uno de los mutantes con sus respectivos genes. Estos genes darA y darB junto con el gen darR, estan involucrados en la capacidad de biocontrol de la cepa silvestre P. fluorescens PCL1606. En conclusión, la capacidad de biocontrol de la cepa P. chlororaphis PCL1606 depende de la producción de HPR, llevada a cabo por los genes dar. Esta investigación ha sido apoyada por el Proyecto GL2011-30345-C02-01 (MICINN, España). CE Calderón recibió el apoyo de una beca de FPI, MICINN, España.