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Resumen Antecedentes Los hongos patogenos han desarrollado estrategias que involucran la expresion de genes que les ayudan a permanecer y multiplicarse en el huesped. La ausencia de las moleculas codificadas por estos genes podria interferir en el crecimiento y muerte de estos hongos. En el pasado, se reporto un gen (Hcp100) que codifica para una proteina coactivadora del hongo Histoplasma capsulatum , el cual se sobreexpresa despues de 1 h de contacto entre las levaduras del hongo y los macrofagos murinos. El producto de este gen, una proteina de 100 kDa (Hcp100) de H. capsulatum , es probablemente una proteina regulatoria involucrada en los procesos necesarios de adaptacion del hongo para la supervivencia en las condiciones hostiles intracelulares de los macrofagos. Un fragmento de 210 pb del marcador Hcp100 ha revelado ser una excelente herramienta para la deteccion molecular de H. capsulatum en muestras clinicas. El potencial uso de este gen como blanco terapeutico en Plasmodium falciparum ha sido explorado a traves de la inhibicion del gen y de la proteina p100 del parasito, logrando bloquear su crecimiento. Metodos Tomando como base los antecedentes mencionados, la Hcp100 podria tener un papel clave en el desarrollo y mantenimiento de las levaduras de H. capsulatum dentro de los macrofagos. Resultados y conclusiones Estudiar la probable funcion de la Hcp100 en la fase de levadura de este patogeno fungico es relevante para entender su actividad y poder proponerla como un blanco terapeutico para el tratamiento de la histoplasmosis.

The genetic diversity of 47 Histoplasma capsulatum isolates from infected bats captured in Mexico, Brazil, and Argentina was studied, using sequence polymorphism of a 240-nucleotides (nt) fragment, which includes the (GA)(n) length microsatellite and its flanking regions within the HSP60 gene. Three human clinical strains were used as geographic references. Based on phylogenetic analyses of 240-nt fragments achieved, the relationships among H. capsulatum isolates were resolved using neighbour-joining and maximum parsimony methods. The tree topologies obtained by both methods were identical and highlighted two major clusters of isolates. Cluster I had three sub-clusters (Ia, Ib, and Ic), all of which contained Mexican H. capsulatum samples, while cluster II consisted of samples from Brazil and Argentina. Sub-cluster Ia included only fungal isolates from the migratory bat Tadarida brasiliensis. An average DNA mutation rate of 2.39 × 10(-9) substitutions per site per year was estimated for the 240-nt fragment for all H. capsulatum isolates. Nucleotide diversity analysis of the (GA)(n) and flanking regions from fungal isolates of each cluster and sub-cluster underscored the high similarity of cluster II (Brazil and Argentina), sub-clusters Ib, and Ic (Mexico). According to the genetic distances among isolates, a network of the 240-nt fragment was graphically represented by (GA)(n) length haplotype. This network showed an association between genetic variation and both the geographic distribution and the ecotype dispersion of H. capsulatum, which are related to the migratory behaviour of the infected bats studied.