Ustilago maydis, the causative agent of corn smut disease, depends on a variety of secreted effector proteins, to establish a biotrophic interaction with its host plant maize. The deletion of the gene um01987, which encodes the effector protein Pep1, leads to a complete loss of pathogenicity. Moreover the plant reacts to penetration attempts of the Δpep1-mutant strain with the induction of different defense reactions. This results in e.g. the formation of necrotic lesion as well as in the production of reactive oxygen species at the penetration sites. Pep1 is conserved among different species of smut fungi and contains a N-terminal signal peptide, a conserved core region as well as a low conserved glycine- and serine-rich C-terminus. In the present study, the effector protein Pep1 was heterologously expressed and purified. Via biochemical and molecular biological methods, two plant interaction partners of Pep1 were identified. By Activity based protein profiling it could be demonstrated, that Pep1 specifically inhibits the activity of papaine like cysteine proteases. Particularly, the activity of papaine like cysteine proteases, induced by the salicylic acid signaling pathway, was inhibited by Pep1 very efficiently. Obviously, these proteases are critical for the induction of maize plant defense. Additionally, Pep1 binds and inhibits plant class-III-heme-peroxidases. In cooperation with Christoph Hemetsberger, the in vitro inhibition of the horseradish peroxidase (HRP) could be shown. Moreover the physical interaction of Pep1 with the HRP was demonstrated. During the Δpep1-infection, a single peroxidase, the maize peroxidase-12, is transcriptionally upregulated. Virus induced gene silencing of the peroxidase-12 lead to a partial complementation of the Δpep1-mutant phenotype on POX12si plants. Thus, silencing of peroxidase-12 leads to the suppression of plant defense reactions, such as the formation of papillae, which enables the Δpep1-mutant strain to successfully penetrate the plant tissue. Taken together these results show, that Pep1 inhibits enzymes of the basal plant defense and therefore suppressing the innate immunity of maize against U. maydis., Ustilago maydis, der Erreger des Maisbeulenbrandes, benötigt zur Etablierung einer biotrophen Interaktion mit seiner Wirtspflanze Mais eine Vielzahl sekretierter Effektoren. Die Deletion des für den Effektor Pep1 kodierenden Gens um01987 führt zum vollständigen Pathogenitätsverlust. Die Pflanze reagiert auf Penetrationsversuche der Δpep1-Mutante mit der Induktion verschiedener Abwehrreaktionen, was sich z.B. durch die Bildung nekrotischer Läsionen sowie reaktiver Sauerstoffspezies an den Penetrationsstellen zeigt. Pep1 ist zwischen verschiedenen Brandpilzarten konserviert und besteht aus einem N-terminalen Signalpeptid, einem konservierten Kernbereich sowie einem weniger konservierten Glycin- und Serin-reichen C-Terminus. In der vorliegenden Arbeit wurde das heterolog in E. coli exprimierte Pep1 aufgereinigt. Durch biochemische und molekularbiologische Methoden konnten zwei pflanzliche Bindungspartner von Pep1 identifiziert. So konnte mittels Aktivitäts-basiertem Protein-Profiling gezeigt werden, dass Pep1 spezifisch apoplastische Papain-ähnliche Cysteinproteasen inhibiert. Diese Proteasen spielen offenbar eine wichtige Rolle in der Abwehrinduktion in der Maispflanze. Des Weiteren bindet und inaktiviert Pep1 pflanzliche Klasse-III-Häm-Peroxidasen. In Kooperation mit Christoph Hemetsberger konnte die Hemmung der Horseradish-Peroxidase (HRP) durch Pep1 in vitro gezeigt. Außerdem konnte die physische Interaktion von Pep1 mit der HRP bewiesen werden. Während der Δpep1-Infektion wird eine Mais Peroxidase, die sekretierte Peroxidase-12, transkriptionell induziert. Durch Virus-induziertes-Gen-silencing der Peroxidase-12 konnte eine partielle Restauration des Δpep1-Phänotyps auf POX12si-Pflanzen bewirkt werden. So führte das silencing der Peroxidase-12 zu einer Unterdrückung pflanzlicher Abwehrreaktionen, wie z.B. der Papillenbildung, was eine erfolgreiche Penetration der Δpep1-Mutante ermöglichte. Zusammenfassend zeigen diese Ergebnisse, dass Pep1 Enzyme der basalen Pflanzenabwehr inhibiert und somit die angeborene Resistenz der Wirtspflanze gegen U. maydis unterdrückt.