Search

El objetivo de la presente investigación fue hidrolizar el polvillo de arroz a azucares reductores y mediante fermentación alcohólica obtener bioetanol. Se prepararon nueve soluciones de polvillo de arroz molido (8 %, 13 % y 18 %) y agua purificada e inoculados con conidios de Trichoderma spp en concentraciones (0,2 g/L, 0,4 g/L y 0,6 g/L), los cuales se incubaron a 30°C por 144 horas. Mediante el método DNS (3, 5 ácido di nitrosalisilico), se cuantificó los azúcares reductores: tratamiento A: 4,32 ± 0,08%, B: 5,27 ± 0,07%, C: 5,10 ± 0,01%, D: 5,53 ± 0,12%, E: 8,24 ± 0,06%, F: 6,37 ± 0,07%, G: 5,13 ± 0,02%, H: 7,19 ± 0,26%, I: 9,69 ± 0,18% y el etanol mediante cromatografía de gases. El tratamiento que presentó mayor porcentaje de bioconversión fue el tratamiento I (18 % y 0,6 g/L de inóculo), donde la concentración de glucosa, fue 9,88%, y el rendimiento de etanol fue de 5° GL. En conclusión, es posible hidrolizar los carbohidratos totales presente en el polvillo de arroz en azucares reductores y posterior fermentación alcohólica.

Optimal tuberculosis testing usually involves sputum centrifugation followed by broth culture. However, centrifuges are biohazardous and scarce in the resource-limited settings where most tuberculosis occurs. To optimize tuberculosis testing for these settings, centrifugation of 111 decontaminated sputum samples was compared with syringe-aspiration through polycarbonate membrane-filters that were then cultured in broth. To reduce the workload of repeated microscopic screening of broth cultures for tuberculosis growth, the colorimetric redox indicator 2,3-diphenyl-5-(2-thienyl) tetrazolium chloride was added to the broth, which enabled naked-eye detection of culture positivity. This combination of filtration and colorimetric growth-detection gave similar results to sputum centrifugation followed by culture microscopy regarding mean colony counts (43 versus 48; P = 0.6), contamination rates (0.9% versus 1.8%; P = 0.3), and sensitivity (94% versus 95%; P = 0.7), suggesting equivalency of the two methods. By obviating centrifugation and repeated microscopic screening of cultures, this approach may constitute a more appropriate technology for rapid and sensitive tuberculosis diagnosis in basic laboratories.